SD大鼠检测：实验动物研究中的重要环节

SD大鼠（Sprague Dawley大鼠）作为全球应用最广泛的实验动物之一，在药理学、毒理学、营养学及疾病模型研究中占据核心地位。其检测流程的科学性和规范性直接影响实验数据的可靠性。成年SD大鼠体重通常为250-500克（雄性偏大），具有繁殖能力强、遗传背景清晰、生理指标稳定等特点，使其成为生物医学研究的首选模型动物。

一、SD大鼠常规检测项目分类

1. 生理生化检测：包括血液常规（WBC、RBC、Hb、PLT等）、血液生化（ALT、AST、BUN、Cr等）、尿液分析（pH值、尿蛋白、尿糖等）指标检测，需使用专用动物血液采集管和生化分析仪。

2. 病理学检测：通过解剖观察各器官形态，进行HE染色、免疫组化等组织病理分析。心脏灌注固定技术可保证组织样本完整性，建议使用4%多聚甲醛灌注液。

3. 行为学检测：包括旷场实验（open field）、Morris水迷宫、强迫游泳等神经行为学测试，需配备视频追踪系统（如EthoVision XT）进行数字化分析。

二、特殊检测技术要求

1. 基因表达检测：采用实时荧光定量PCR技术时，推荐使用TRIzol法提取组织RNA，引物设计需跨越内含子区域。microCT检测骨密度时，扫描分辨率应达到18μm以上。

2. 代谢组学分析：采集血浆样本需在4℃条件下3000rpm离心15分钟，使用预冷EDTA抗凝管。建议液氮速冻后-80℃保存，避免反复冻融。

三、样本采集规范与注意事项

1. 血液采集：尾静脉采血每次不超过体重的1%（约0.3ml/100g），心脏穿刺需在麻醉状态下进行。建议使用23G针头，采血后立即轻柔颠倒混匀抗凝剂。

2. 组织取样：肝脏取样应避开胆囊区域，取右叶中部；肾脏取样选择皮质与髓质交界处。所有器械需经高温高压灭菌，不同组织应分装于标记清晰的冻存管。

四、质量控制关键环节

1. 环境控制：饲养室温度维持22±2℃，相对湿度40-70%，光照周期12h明/12h暗。噪声应＜60分贝，氨浓度控制在14mg/m³以下。

2. 实验设计：设置空白对照组、模型组、给药组（至少3个剂量组），每组样本量≥8只。随机分组时应考虑体重差异不超过±10%。

3. 数据记录：建立电子化实验日志，详细记录麻醉时间（异氟烷诱导3-5分钟）、采血时间（避开昼夜节律影响）、异常行为等关键信息。

五、伦理与法规遵循要点

1. 实验方案必须通过IACUC（实验动物管理与使用委员会）审查，符合3R原则（替代、减少、优化）。疼痛操作需使用布托啡诺等镇痛剂。

2. 安乐死执行标准：CO2吸入法气体流速为30%-70%笼体积/min，确认呼吸停止后需实施颈椎脱位等物理方法确保死亡。

规范的SD大鼠检测体系建立需要整合动物学、病理学、分子生物学等多学科知识。研究者应定期参加GLP规范培训，更新实验技术，特别是在类器官培养、单细胞测序等新技术应用中，更需严格把控检测质量，确保科研数据的准确性和可重复性。

检测机构资质证书

CMA认证

检验检测机构资质认定证书

证书编号：241520345370

有效期至：2030年4月15日

CNAS认可

实验室认可证书

证书编号：CNAS L22006

有效期至：2030年12月1日

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证书编号：ISO9001-2024001

有效期至：2027年12月31日

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