菌落总数（Total Viable Count, TVC）是评价样品（食品、水、化妆品、环境等）中需氧或兼性厌氧微生物污染程度的核心指标，反映卫生状况及潜在腐败风险。以下是基于 GB 4789.2-2022（食品安全国家标准）、ISO 4833-1:2013 及 USP <61> 的通用检测流程：
一、检测原理与适用范围
- 原理：通过倾注平板法或涂布法，在特定培养基上培养微生物，统计单位质量/体积样品中形成的菌落数（CFU/g或CFU/mL）。
- 适用样品：食品、饮用水、药品原料、化妆品、环境拭子等。
二、设备与材料
| 类别 |
设备/试剂 |
规格/要求 |
| 培养基 |
平板计数琼脂（PCA） |
灭菌后pH 7.0±0.2，46℃保温备用 |
| 稀释液 |
磷酸盐缓冲液（PBS, 0.85% NaCl） |
灭菌后pH 7.2~7.4 |
| 耗材 |
无菌培养皿、移液管、均质袋 |
预灭菌（121℃, 15min） |
| 仪器 |
恒温培养箱、均质器、菌落计数器 |
培养温度30~37℃（依标准选择） |
三、操作流程
1. 样品制备与稀释
- 固体样品：无菌称取25g，加入225mL PBS，均质2min（拍击式均质器，频率≥8次/秒），得10⁻¹稀释液。
- 液体样品：直接吸取25mL+225mL PBS，混匀得10⁻¹稀释液。
- 梯度稀释：依次取1mL前稀释液+9mL PBS，制成10⁻²、10⁻³等梯度（通常选择2~3个梯度）。
2. 倾注平板
- 取1mL各稀释液注入无菌培养皿；
- 倒入15~20mL冷却至46℃的PCA，迅速旋转混匀；
- 凝固后倒置培养。
3. 培养条件
- 食品/化妆品：30~37℃培养48±2小时（GB 4789.2）；
- 饮用水：35℃培养24小时（EPA 9215D）；
- 药品：30
35℃培养35天（USP <61>）。
4. 菌落计数
- 计数规则：选择菌落数30~300 CFU/皿的稀释度；
四、结果判定与报告
| 样品类型 |
安全限值（示例） |
标准依据 |
| 即食食品 ≤10⁴ CFU/g |
GB 29921-2021 |
|
| 饮用水 ≤100 CFU/mL（总大肠菌群未检出） |
GB 5749-2022 |
|
| 化妆品膏霜 ≤500 CFU/g（眼/唇部≤100） |
《化妆品安全技术规范》2022 |
|
报告要求：
- 注明检测方法（如GB 4789.2-2022）；
- 菌落总数结果（保留两位有效数字，如1.3×10⁵ CFU/g）；
- 若所有稀释度均<1 CFU，报告“<1×最低稀释倍数”（如<10 CFU/g）。
五、质量控制与注意事项
- 空白对照：稀释液+培养基不接种样品，应无菌落生长；
- 平行试验：每个稀释度至少2个平行皿，允许误差≤15%（同稀释度菌落数差异）；
- 干扰处理：
- 颗粒干扰：样品含不溶物时，用含0.1%吐温80的PBS稀释；
- 抑菌性：若样品抑制微生物生长（如含防腐剂），需中和处理（如添加卵磷脂、硫代硫酸钠）；
- 菌落识别：
- 排除气泡、杂质及蔓延菌落（H₂O重新凝固后计数非蔓延区）。
六、常见问题与解决方案
| 问题 |
原因分析 |
优化措施 |
| 菌落过多无法计数 |
稀释梯度不足或样品污染 |
增加稀释梯度（如10⁻⁴、10⁻⁵），缩短取样与操作时间 |
| 菌落蔓延（卫星状） |
培养基过湿或冷凝水过多 |
减少倒板量（15mL/皿），预干燥培养基表面 |
| 无菌落生长 |
样品抑菌或操作污染 |
增加中和剂，验证无菌操作（酒精灯旁操作） |
| 结果重复性差 |
稀释不均或培养温度波动 |
均质时间延长至3min，校准培养箱温度（±0.5℃） |
七、快速检测方法（补充）
- 显色培养基法：如3M Petrifilm™菌落总数测试片（37℃培养24h，红色菌落计数）；
- ATP生物发光法：5分钟内检测总微生物量（需校准与菌落计数的相关性）；
- 流式细胞术：针对水样快速定量活菌（ISO 19344:2015）。
通过标准化的菌落总数检测，可有效评估样品的微生物安全水平。建议定期参与能力验证（如CNAS PT计划），并建立实验室内部SOP（标准操作程序），确保检测结果的准确性与可比性。
CMA认证
检验检测机构资质认定证书
证书编号：241520345370
有效期至：2030年4月15日
CNAS认可
实验室认可证书
证书编号：CNAS L22006
有效期至：2030年12月1日
ISO认证
质量管理体系认证证书
证书编号：ISO9001-2024001
有效期至：2027年12月31日
扫一扫，更多精彩